Ответы к тестам НМО: «Основные инструменты внутреннего контроля качества флуоресцентной гибридизации in situ (FISH) и хромогенной гибридизации in situ (CISH) в патологоанатомическом отделении (бюро)»

1. FISH — это

1) линейные диаграммы;
2) гистограммы;
3) иммуногистохимическое исследование;
4) флуоресцентная гибридизация in situ. +

2. Артефакт аутофлуоресценции устраняется с помощью

1) увеличения фиксации до 72 часов и более;
2) уменьшения времени фиксации до 2 часов;
3) уменьшения времени уборки помещения;
4) специальных фильтров. +

3. В качестве референсных/контрольных образцов не используют

1) неизвестную ткань; +
2) коммерческие контроли;
3) архивные образцы с верифицированным статусом;
4) контроли с известными мутациями.

4. Внутренний контроль качества включает

1) мытье окон;
2) уборку помещения;
3) ведение журналов; +
4) окрашивание стен.

5. Для контроля качества фиксации необходимо вести

1) журнал архивации;
2) журнал фиксации; +
3) журнал окрашивания;
4) журнал уборки.

6. Для контроля работы гибридайзера необходимо проводить

1) мытье полов;
2) фиксацию;
3) окрашивание;
4) температурный мониторинг. +

7. Для предотвращения отслоения ткани со стекла при FISH/CISH исследовании необходимо использовать

1) адгезивные стекла; +
2) покровные стекла;
3) металлические пластины;
4) обычные предметные стекла.

8. Для стандартизации микроскопии необходимо проводить

1) окрашивание;
2) фиксацию;
3) уборку помещения;
4) калибровку оборудования. +

9. Для цитоблоков рекомендуется уменьшать

1) время фиксации до 30 минут в 40% формалине;
2) время окрашивания гематоксилин-эозином;
3) время протеазной обработки; +
4) время гибридизации с эозином.

10. Для цитологических препаратов (цитоблоков) оптимальная толщина срезов составляет

1) более 10 мкм;
2) не более 4 мкм; +
3) 15 мкм;
4) 10-20 мкм.

11. Журнал контроля качества должен храниться не менее

1) 5 лет; +
2) 300 лет;
3) 1 часа;
4) 1 месяца.

12. К реагентам для FISH/CISH исследованиям относятся

1) реагенты для пробоподготовки образцов и зонды; +
2) только спирт;
3) гистологический препарат;
4) H2O2 13%.

13. Клеточные линии используются для

1) контроля качества; +
2) дегидратации;
3) окрашивания;
4) фиксации.

14. Маркировка участка ткани с наибольшим % опухолевого субстрата для проведения макродиссекции проводится

1) пациентом;
2) медицинским регистратором;
3) санитаром;
4) врачом-патологоанатомом. +

15. Минимальное соотношение сигнал/шум для качественной гибридизации составляет

1) 1:1;
2) 500:100;
3) 3:1; +
4) 200:10.

16. Минимальное соотношение ткань/фиксатор составляет

1) 1:60;
2) 1:20; +
3) 1:11;
4) 1:5.

17. Негативный контроль используется для проверки

1) специфичности метода; +
2) температуры помещения;
3) температуры хранения зондов;
4) времени фиксации.

18. Новую партию зондов перед использованием необходимо

1) заморозить;
2) тестировать на контролях; +
3) развести весь объем;
4) сразу использовать.

19. Обучение персонала должно включать

1) только теорию;
2) практикум по интерпретации и обучение на конкретных системах; +
3) только чтение лекций;
4) только вебинар.

20. Обучение персонала проводят

1) по желанию;
2) 1 раз в 5 лет;
3) регулярно; +
4) 10 раз в год.

21. Обязательная процедура ежедневного контроля микроскопа включает

1) полную разборку;
2) проверку фокусировки; +
3) только пометку в журнале контроля;
4) замену лампы.

22. Обязательным при получении отрицательного результата является

1) замена всех реагентов на новые;
2) немедленная выдача результата;
3) проверка позитивного контроля; +
4) повторение анализа без изменений.

23. Оптимальное время фиксации в формалине для FISH/CISH составляет

1) 24 часа; +
2) 3-5 суток;
3) 1-2 часа;
4) не более 1 недели.

24. Оптимальным фиксатором для подготовки патоморфологического материала к FISH/CISH-исследованию является

1) спирт;
2) параформальдегид;
3) 10% нейтральный забуференный формалин; +
4) БОУН-фиксатор.

25. Основная цель обработки протеиназой или протеазой при FISH/CISH исследовании

1) демаскировка нуклеиновых кислот; +
2) дегидратация;
3) “приклеивание” ткани к стеклу;
4) окрашивание ткани.

26. Основным преимуществом метода CISH перед FISH является

1) лучшее соотношение сигнал/шум;
2) возможность мультиплексного анализа;
3) возможность использования светового микроскопа и долговременное сохранение препарата; +
4) более высокая чувствительность.

27. Ошибки на преаналитическом этапе (этапе первичной гистологической обработке материала)

1) все легко исправимы;
2) необходимо повторить для подтверждения;
3) требуют заменить оборудование;
4) в большинстве случаев не поправимы. +

28. Позитивный контроль используется для проверки

1) чувствительности метода; +
2) чистоты стекол;
3) времени фиксации;
4) температуры помещения.

29. При высоком фоне необходимо

1) увеличить время и количество отмывок; +
2) убрать отмывку из протокола;
3) увеличить время гибридизации на 24 часа;
4) уменьшить время фиксации до 3 часов.

30. При высоком фоне необходимо проверить

1) время уборки;
2) цвет стен;
3) температуру помещения;
4) строгость промывок. +

31. При использовании неправильного фиксатора возможен результат

1) усиление сигнала;
2) непригодность образца; +
3) уменьшение фона;
4) улучшение морфологии.

32. При макродиссекции выделяют

1) исследуемые хромосомы;
2) опухолевую ткань; +
3) всю ткань;
4) РНК.

33. При недостаточной протеазной обработке возможен результат

1) улучшение морфологии;
2) ложноположительный;
3) усиление сигнала;
4) ложноотрицательный. +

34. При отслоении ткани от стекла необходимо использовать

1) адгезивные стекла; +
2) покровные стекла;
3) металлические пластины;
4) обычные стекла.

35. При отсутствии сигнала необходимо проверить

1) цвет стен;
2) температуру помещения;
3) время фиксации и преаналитический этап; +
4) время уборки.

36. При перефиксации материала более 72 часов возможен результат

1) ложноположительный из-за улучшения морфологических характеристик ткани;
2) усиление сигнала;
3) ложноотрицательный из-за чрезмерного образования сшивок; +
4) улучшение морфологии.

37. При слабом сигнале необходимо проверить

1) температуру помещения;
2) цвет стен;
3) время уборки помещения;
4) преаналитический этап.

38. Протокол валидации должен включать

1) только данные об образце;
2) данные сотрудников лаборатории;
3) все экспериментальные данные; +
4) личные данные пациента.

39. Протокол подсчета сигналов для анализа Her2-neu включает в себя

1) подсчет затраченного времени на исследование;
2) ежедневную генеральную уборку;
3) интерпретацию результатов лаборантом;
4) подсчет сигналов 20 клеток. +

40. Ревалидацию методов проводят каждые

1) 100 лет;
2) пару дней;
3) 2 года или при изменении условий/реагентов; +
4) 50 лет.

41. Рекомендуемая толщина срезов для FISH-анализа составляет

1) 1-20 мкм;
2) не более 3 мкм; +
3) 6-9 мкм;
4) 7-8 мкм.

42. Субъективная оценка должна быть

1) исключена; +
2) принята и незамедлительно выдан ответ;
3) принята без обсуждений;
4) принята без перепроверки.

43. Температура хранения образцов составляет

1) +37°C;
2) +4…-20°C; +
3) -100°C;
4) +64°C.

44. Участие в межлабораторных сравнениях проводится для

1) соревнования;
2) встречи коллег;
3) контроля качества; +
4) создания конфликтных ситуаций.