Ответы на тесты НМО: Основные инструменты внутреннего контроля качества иммуногистохимических исследований в гистологической лаборатории

1. Аналитический этап для иммуногистохимического исследования

1) демаскировка антигена; +
2) декальцинация;
3) архивирование;
4) проводка.

2. В рабочую группу контроля качества не входит

1) биолог;
2) заведующий патологоанатомическим отделением; +
3) ответственный врач-патологоанатом, имеющий специальные знания по контролю качества;
4) биолог;
5) старший лаборант.

3. В результате иммуногистохимического окрашивания затруднительно отличить истинный сигнал от сильного фонового окрашивания, наблюдаются перекрестные реакции или оценка статуса затруднена из-за иных артефактов, возникших в связи с некачественным окрашиванием, оценивается как

1) плохо;
2) оптимально;
3) погранично; +
4) хорошо.

4. В результате иммуногистохимического окрашивания наблюдаются ложноположительные и/или ложноотрицательные реакции хотя бы в одном образце ткани и оценивается

1) оптимально;
2) плохо; +
3) погранично;
4) хорошо.

5. В результате иммуногистохимического окрашивания полное отсутствие недостатков и имеются соответствия принятым в мире стандартам «идеального окрашивания», оценивается как

1) хорошо;
2) погранично;
3) плохо;
4) оптимально. +

6. В случае невозможности включить в позитивный контроль ткани с разной интенсивностью, стоит выбрать образец ткани

1) со слабой интенсивностью окрашивания;
2) с умеренной интенсивностью окрашивания; +
3) с выраженной интенсивностью окрашивания;
4) с отсутствием окрашивания.

7. В срезах после окрашивания все клетки имеют интенсивный синий цвет в результате

1) низкой концентрации антител при разведении концентрата;
2) недостаточного времени докрашивания гематоксилином;
3) неподавленной активности эндогенной пероксидазы;
4) длительного докрашивания гематоксилином. +

8. В срезах после окрашивания все клетки имеют интенсивный синий цвет в результате

1) недостаточного времени докрашивания гематоксилином;
2) низкой концентрации антител при разведении концентрата;
3) неподавленной активности эндогенной пероксидазы;
4) слишком высокой концентрации докрашивающего раствора. +

9. В срезе отмечается отпадение тканей в результате

1) недостаточной фиксации; +
2) несовместимости буфера для маскировки;
3) короткого времени демаскировки;
4) длительного использования буфера для демаскировки.

10. В срезе отмечается отпадение тканей в результате

1) несовместимости буфера для маскировки;
2) длительного использования буфера для демаскировки;
3) короткого времени демаскировки;
4) использования интенсивного протокола демаскировки. +

11. В срезе отсутствие, неравномерное, неспецифическое фоновое или ослабленное окрашивание в тканях пациента при наличии-клеток мишеней и адекватном окрашивании в позитивных контрольных тканях, возникает в результате

1) недостаточной фиксации; +
2) несовместимости буфера для демаскировки;
3) короткого времени окрашивания;
4) низкая концентрации антител.

12. Внутренний контроль качества регламентируется приказом МЗ РФ от 31.07.2020 г. №

1) №785н; +
2) №207н;
3) №174н;
4) №587н.

13. Диффузное фоновое окрашивание тканей пациента и контрольных тканей с перекрашиванием позитивных клеток-мишеней возникает в результате

1) длительной фиксации ткани пациента;
2) низкой концентрации антител при разведении концентрата;
3) короткой фиксации ткани пациента;
4) высокой концентрации антител при разведении концентрата. +

14. Для контроля качества растворов для окраски, красителей и химикатов ведется

1) журнал учета реагентов и химикатов; +
2) технологическая карта;
3) журнал смены реагентов в гистопроцессоре;
4) журнал смены реагентов в гистостейнере.

15. Избыточное фоновое окрашивание хромогеном контрольных тканей и тканей пациента или только тканей пациента возникает в результате

1) несовместимости субстрат-хромоген;
2) длительной докрашивания гематоксилином;
3) низкой концентрация антител при разведении концентрата;
4) неподавленной активности эндогенной пероксидазы. +

16. Избыточное фоновое окрашивание хромогеном контрольных тканей и тканей пациента или только тканей пациента возникает в результате

1) несовместимости субстрат-хромогена;
2) избыточной инкубации субстрат-хромогена; +
3) низкой концентрации антител при разведении концентрата;
4) длительного докрашивания гематоксилином.

17. Изготовление библиотек предметных стекол с нанесенными контрольными тканями позволит

1) повысить учет постановки ИГХ-реакций;
2) сократить время работы;
3) не допустить постановки ИГХ-реакции с неправильной контрольной тканью; +
4) повысить ответственность гистотехника.

18. К отлетанию среза от покровного стекла может привести все, кроме

1) интенсивного протокола демаскировки;
2) низкой концентрации антител при разведении концентрата; +
3) недостаточной фиксации;
4) нарушения работы с водяной бани во время микротомии.

19. Контрольные мультиблоки изготавливаются на основе технологии

1) гуанидинтиоцианат-фенол-хлороформной экстракции;
2) тканевых матриц; +
3) сорбции на силикагеле;
4) фенол-хлороформной экстракции.

20. На микропробирке рабочего раствора указывают все, кроме

1) порядкового номера;
2) даты разведения;
3) титра антитела;
4) названия антитела;
5) ФИО приготовившего разведение. +

21. Не следует хранить заранее изготовленные контрольные срезы

1) более 10 дней; +
2) более 20 дней;
3) более 15 дней;
4) более 25 дней.

22. Негативные контрольные ткани позволяют оценить

1) правильность выявления эпитопа;
2) специфичность;
3) соблюдение техники окрашивания;
4) чувствительность протокола окрашивания.

23. Неравномерное окрашивание тканей пациента с наличием клеток-мишеней при нормальном окрашивании позитивной контрольной ткани возникает в результате

1) несовместимости буфера для демаскировки;
2) короткого времени окрашивания;
3) большой толщины кусочка при вырезке; +
4) низкая концентрации антител.

24. Неспособность частей среза окрашиваться антителами или докрасками возникает в результате

1) неполного депарафинирования; +
2) несовместимости буфера для демаскировки;
3) длительной окраски гематоксилином;
4) короткого времени инкубации первичного антитела.

25. Оптимальная толщина ткани, наиболее подходящая под блоки-доноры

1) 5–6 мм;
2) 3–4 мм; +
3) 1–2 мм;
4) 7–8 мм.

26. Ответственным лицом за организацию и контроль качества иммуногистохимических исследований является

1) старший лаборант;
2) заведующий патологоанатомическим отделением; +
3) ответственный врач-патологоанатом, имеющий специальные знания по контролю качества;
4) биолог.

27. Отсутствие окрашивания в позитивной контрольной ткани и ткани пациента при наличии клеток-мишеней в результате

1) несовместимости буфера для демаскировки; +
2) длительной докраски гематоксилином;
3) длительной фиксации ткани в формалине;
4) короткой фиксации.

28. Отсутствие окрашивания или слабое окрашивание в контрольных тканях и тканях пациента при наличии клеток-мишеней в результате

1) короткого времени фиксации тканей пациента;
2) избыточной инкубации субстрат-хромоген;
3) неподавленной активности эндогенной пероксидазы;
4) избыточной сушки после монтирования срезов. +

29. Отсутствие окрашивания тканей пациента при наличии клеток-мишеней и позитивных контрольных тканей возникает в результате

1) избыточной фиксации тканей пациента;
2) высыхания среза во время окрашивания; +
3) избыточной инкубации субстрат-хромоген;
4) неподавленной активности эндогенной пероксидазы.

30. Отсутствие окрашивания тканей пациента при наличии клеток-мишеней и позитивных контрольных тканей возникает в результате

1) избыточной инкубации субстрат-хромогена;
2) неподавленной активности эндогенной пероксидазы;
3) несовместимости субстрат-хромогена; +
4) избыточной фиксацией тканей пациента.

31. Оценить аналитическую чувствительность иммуногистохимического окрашивания способны

1) клетки с низким уровнем экспрессии; +
2) клетки со средним уровнем экспрессии;
3) клетки с отсутствием экспрессии;
4) клетки с высоким уровнем экспрессии.

32. Постаналитический этап для иммуногистохимического исследования

1) демаскировка антигена;
2) архивирование; +
3) проводка;
4) декальцинация.

33. Постналитическим этапом для иммуногистохимического исследования является

1) формирование заключения; +
2) демаскировка;
3) первичная инкубация антител;
4) заключение в парафин.

34. Преаналитический этап для иммуногистохимического исследования

1) демаскировка антигена;
2) выбор первичного антитела;
3) архивирование;
4) проводка. +

35. Преаналитическим этапом для иммуногистохимического исследования является

1) первичная инкубация антител;
2) формирование заключения;
3) заключение в парафин; +
4) демаскировка.

36. Результат иммуногистохимического окрашивания имеет ряд недостатков, не мешающих правильной постановке диагноза, оценивается как

1) хорошо; +
2) плохо;
3) оптимально;
4) погранично.

37. Рекомендуется исправление протокола окрашивания и повторная валидация при оценке

1) отлично;
2) оптимально;
3) хорошо;
4) погранично. +

38. Рекомендуется исправление протокола окрашивания и повторная валидация при оценке

1) хорошо;
2) отлично;
3) оптимально;
4) плохо. +

39. Слабое окрашивание тканей пациента при наличии клеток-мишеней и позитивных контрольных тканей возникает в результате

1) низкой концентрации антител при разведении концентрата; +
2) большой толщины кусочка при вырезке;
3) короткой фиксации ткани пациента;
4) длительной фиксации ткани пациента в формалине.

40. Учет контрольных мультиблоков осуществляется с помощью

1) журнала учета реагентов и химикатов;
2) журнала смены реагентов в гистопроцессоре;
3) журнала смены реагентов в гистостейнере;
4) журнала по изготовлению мультиблоков. +

41. Функциональные обязанности рабочей группы по контролю качества

1) контроль уровня реагентов в емкостях стейнера для окрашивания;
2) смена реагентов по утвержденному графику в СОПе;
3) организация закупки реагентов;
4) контроль и участие в валидации протоколов иммуногистохимических окрашиваний при смене партии реагентов, поступивших в отделение, при применении разных клонов одного и того же антитела. +

42. Функциональные обязанности рабочей группы по контролю качества

1) организация закупки реагентов;
2) контроль уровня реагентов в емкостях стейнера для окрашивания;
3) разработка и ведение журналов внутрилабораторного контроля качества иммуногистохимических окрашиваний; +
4) смена реагентов по утвержденному графику в СОПе.

43. Функциональные обязанности рабочей группы по контролю качества

1) смена реагентов по утвержденному графику в СОПе;
2) организация закупки реагентов;
3) разбор выявленных нарушений, дополнительное обучение сотрудников внутри отделения; +
4) контроль уровня реагентов в емкостях стейнера для окрашивания.

44. Функциональные обязанности рабочей группы по контролю качества

1) постоянное совершенствование и внедрение новых СОП при изменениях в технологических процессах при выполнении иммуногистохимических исследований; +
2) организация закупки реагентов;
3) контроль уровня реагентов в емкостях стейнера для окрашивания;
4) смена реагентов по утвержденному графику в СОП.

45. Ядерно-цитоплазматическую локализацию (окрашивание) имеет

1) белок S100; +
2) коллаген IV типа;
3) белок СD45;
4) белок GCDFP15.