Тест с ответами по теме «Диагностика туберкулеза: современные возможности молекулярно-генетических технологий» | Тесты НМО с ответами

1. Большинство устойчивых к изониазиду изолятов микобактерий туберкулеза имеют мутации в гене

1) katG, который кодирует каталазу-пероксидазу;+
2) rrs, который кодирует 16S рРНК;
3) rpoB, который кодирует β-субъединицу РНК-полимеразы;
4) atpE, который кодирует субьединицу АТФ синтазы.

2. Большинство устойчивых к рифампицину изолятов микобактерий туберкулеза имеют мутации в гене

1) atpE, который кодирует субъединицу АТФ синтазы;
2) rpoB, который кодирует β-субъединицу РНК-полимеразы;+
3) rrs, который кодирует 16S рРНК;
4) katG, который кодирует каталазу-пероксидазу.

3. В каком из документов метод ПЦР был определен как один из основных методов диагностики туберкулеза?

1) СанПиН 3.3686-21 «Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней»;
2) Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению туберкулеза органов дыхания, 2014 год;+
3) Приказ Минздрава РФ от 21.03.2003 №109 «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации;
4) МУ 1.3.2569-09 Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности.

4. В настоящее время на территории России зарегистрированы и доступны к применению молекулярно-генетические тест-системы, позволяющие выявлять мутации устойчивости микобактерий туберкулеза

1) только к рифампицину и изониазиду;
2) к протионамиду/этионамиду, пиразинамиду, бедаквилину, линезолиду;
3) ко всем противотуберкулезным препаратам I и II ряда;
4) к рифампицину, изониазиду, фторхинолонам, аминогликозидам/канамицину, этамбутолу.+

5. В случае ингибирования ПЦР должно быть выдано заключение

1) ДНК M. tuberculosis complex не обнаружена;
2) необходимо повторить исследование;+
3) ДНК M. tuberculosis complex обнаружена;
4) обнаружена ДНК нетуберкулезных микобактерий.

6. В случае, если при микроскопии клинического образца были выявлены кислотоустойчивые микобактерии, а результат ПЦР на наличие ДНК M. tuberculosis complex оказался отрицательным, можно предположить наличие

1) гетерогенной популяции микобактерий;
2) в образце ингибиторов ПЦР;
3) в образце нетуберкулезных микобактерий;+
4) контаминации при проведении ПЦР.

7. В ходе полимеразной цепной реакции происходит

1) многократное специфическое копирование молекул белка;
2) многократное копирование праймеров, входящих в состав реакционной смеси;
3) многократное специфическое копирование участка ДНК;+
4) достраивание новой цепи ДНК при участии фермента ДНК-лигазы.

8. Верными являются утверждения

1) частота возникновения мутаций может зависеть от гена, в котором происходит мутация;+
2) формирование устойчивости микобактерий туберкулеза к рифампицину не зависит от приверженности пациента к лечению, определяется только генетическими особенностями возбудителя;
3) у одного пациента не могут быть выделены микобактерии туберкулеза, часть из которых чувствительна к фторхинолонам, а часть имеет мутации устойчивости к фторхинолонам;
4) возникновение спонтанных мутаций – естественный процесс, происходящий с определенной частотой.+

9. Возникновение компенсаторных мутаций в ДНК микобактерий туберкулеза

1) приводит к формированию клеток микобактерий, способных расти на простых питательных средах;
2) негативно влияет на жизнеспособность микобактерий и приводит к их гибели;
3) позволяет уменьшить негативное влияние мутации, обуславливающей устойчивость, в результате бактерии повышают свою жизнеспособность;+
4) обуславливает формирование широкой лекарственной устойчивости.

10. Высокая специфичность полимеразной цепной реакции достигается путем

1) исследования материала, полученного непосредственно из очага поражения;
2) подбора праймеров;+
3) сокращения времени проведения реакции;
4) использования одноразового инструмента и посуды.

11. Генетическая информация в клетке Mycobacterium tuberculosis представлена

1) плазмидами;
2) одной линейной молекулой ДНК;
3) одной кольцевой молекулой ДНК;+
4) двумя кольцевыми молекулами ДНК.

12. Геном Mycobacterium tuberculosis штамма H37Rv впервые был расшифрован в

1) 2010 году;
2) 1984 году;
3) 1968 году;
4) 1998 году.+

13. Генотипирование клинических изолятов M. tuberculosis позволяет

1) определять лекарственную устойчивость;
2) проводить диагностику туберкулеза;
3) дифференцировать случаи недавнего заражения и/или реактивации туберкулезного процесса;+
4) проводить мониторинг эпидемиологически значимых штаммов возбудителя.+

14. График флюоресценции для внутреннего контрольного образца позволяет отслеживать

1) прохождение ПЦР;+
2) наличие нетуберкулезных микобактерий;
3) наличие ДНК микобактерий туберкулеза;
4) контаминацию.

15. Если в результате выполнения исследований методом ПЦР в образце выявляется ДНК M. tuberculosis complex, но нет роста микобактерий на плотных или жидких питательных средах можно заподозрить

1) наличие в образце противотуберкулезных препаратов;
2) наличие в образце нетуберкулезных микобактерий;
3) наличие ошибок при проведении исследований;+
4) наличие в образце нежизнеспособных клеток микобактерий туберкулеза.+

16. Если в результате выполнения исследований методом ПЦР в образце не выявляется ДНК M. tuberculosis complex, но есть рост микобактерий на плотных/ жидких питательных средах можно заподозрить

1) наличие в образце нежизнеспособных клеток микобактерий туберкулеза;
2) наличие ошибок при проведении исследований;+
3) наличие в образце противотуберкулезных препаратов;
4) наличие в образце нетуберкулезных микобактерий.+

17. Забор клинического материала для молекулярно-генетических исследований должен производиться с использованием

1) одноразового инструмента и стерильного многоразового контейнера;+
2) специальных контейнеров, предназначенных для молекулярно-генетических исследований;
3) стерильного многоразового инструмента и посуды.

18. Использование молекулярно-генетических методов для тестирования лекарственной устойчивости микобактерий туберкулеза

1) по срокам исследования соответствует культуральным методам;
2) позволяет не проводить культуральные методы тестирования лекарственной чувствительности, которые являются дорогостоящими и длительными;
3) позволяет сократить сроки обследования пациентов;+
4) является первоначальным этапом обследования пациентов и не исключает необходимость применения традиционных культуральных методов тестирования лекарственной чувствительности.+

19. Использование полимеразной цепной реакции позволяет

1) выявлять ДНК микобактерии туберкулеза в любом клиническом материале, независимо от локализации туберкулезного процесса и предполагаемого количества возбудителя;
2) выявлять ДНК, принадлежащую как живым, так и убитым микроорганизмам;+
3) выявлять ДНК, принадлежащую только живым микроорганизмам;
4) работать с любым клиническим материалом, в котором предположительно содержится максимальное количество возбудителя.+

20. К быстрорастущим видам нетуберкулезных микобактерий относится

1) M. fortuitum;+
2) M. abcsessus;+
3) M. avium;
4) M. intracellulare.

21. К медленнорастущим видам нетуберкулезных микобактерий относится

1) M. intracellulare;+
2) M. abcsessus;
3) M. avium;+
4) M. fortuitum.

22. Материал, полученный при проведении пункционной столбиковой биопсии пристеночного образования легкого для верификации диагноза, должен быть исследован

1) комплексом методов, включающих гистологические, молекулярно-генетические и бактериологические;+
2) исключительно молекулярно-генетическими методами;
3) только гистологическими методами;
4) только бактериологическими методами.

23. Молекулярно-генетические исследования для контроля химиотерапии туберкулеза рекомендуется провести

1) по окончании интенсивной фазы лечения для контроля бактериовыделения;
2) при снятии пациента с диспансерного учета в противотуберкулезном учреждении;
3) через 2 недели после начала специфической химиотерапии;
4) при наличии у больного признаков неэффективной химиотерапии и сохранении бактериовыделения по окончании интенсивной фазы химиотерапии.+

24. Молекулярно-генетические технологии позволяют исследовать

1) олеиновую кислоту микобактерий;
2) миколовую кислоту микобактерий;
3) пептидогликаны микобактерий;
4) дезоксирибонуклеиновую кислоту микобактерий.+

25. Молекулярно-генетические технологии позволяют предсказывать наличие фенотипической устойчивости к препарату на основе изучения

1) определенных участков ДНК микобактерий;+
2) нуклеотидной последовательности праймеров;
3) нуклеотидной последовательности зондов;
4) последовательности ДНК плазмид микобактерий.

26. Молекулярным механизмом лекарственной устойчивости микобактерий туберкулеза является

1) инактивация фермента, приводящего антибиотик в активную форму;+
2) усиленное выведение препарата из бактериальной клетки;+
3) стабильность мишени препарата;
4) ферментативная инактивация препарата.+

27. Мутации в 88 — 94 кодонах гена gyrA связаны с фенотипической устойчивостью микобактерий туберкулеза

1) к группе фторхинолонов, при получении культуры микобактерий необходимо провести фенотипическое тестирование лекарственной чувствительности ко всем фторхинолонам, применяющимся в клинике;+
2) только к моксифлоксацину, при получении культуры микобактерий необходимо провести фенотипическое тестирование лекарственной чувствительности левофлоксацину;
3) только к левофлоксацину, при получении культуры микобактерий необходимо провести фенотипическое тестирование лекарственной чувствительности к моксифлоксацину;
4) к офлоксацину, при получении культуры микобактерий необходимо провести фенотипическое тестирование лекарственной чувствительности к левофлоксацину и моксифлоксацину.

28. Наличие в геноме микобактерий любой мутации в гене rpoB является маркером

1) устойчивости к этамбутолу;
2) туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью;+
3) туберкулеза с широкой лекарственной устойчивостью;
4) устойчивости к протионамиду.

29. Однократное выявление ДНК M. tuberculosis complex в клиническом материале

1) служит надежным маркером присутствия микобактерий туберкулеза у пациента благодаря высокой чувствительности метода ПЦР;
2) может свидетельствовать об активной туберкулезной инфекции;
3) может быть связано с хроническим течением туберкулезной инфекции;
4) требует осторожной интерпретации в качестве положительного результата и согласования с другими клинико-диагностическими и анамнестическими данными.+

30. Полимеразная цепная реакция в режиме реального времени позволяет

1) проводить визуализацию результатов непосредственно в ходе реакции;+
2) выдать заключение о наличии/отсутствии ДНК в образце уже через 30 мин после начала исследования;
3) проводить реакцию без использования термоциклеров;
4) проводить электрофорез в агарозном геле непосредственно во время амплификации.

31. Представители M. tuberculosis complex

1) не различаются по тропизму к хозяину;
2) характеризуются низким сходством последовательности ДНК;
3) характеризуются высоким сходством последовательности ДНК;+
4) характеризуются идентичными последовательностями 16S рРНК.+

32. При исследовании гистологических препаратов возникло подозрение на туберкулезную этиологию процесса. Какие дальнейшие исследования рекомендованы?

1) необходимо провести многократную люминесцентную микроскопию гистологического препарата;
2) необходимо провести исследование парафиновых блоков молекулярно-генетическими методами для подтверждения наличия в образце ДНК M. tuberculosis complex;+
3) необходимо провести исследование парафиновых блоков бактериологическими методами для получения культуры микобактерий;
4) необходимо повторно выполнить оперативное вмешательство, чтобы получить материал для молекулярно-генетических и бактериологических исследований.

33. При исследовании клинического образца молекулярно-генетическими методами мутации в гене rpoB выявлено не было, но при получении культуры микобактерий была определена ее фенотипическая резистентность к рифампицину. Каковы возможные причины расхождения результатов?

1) однородная популяция микобактерий у пациента;
2) наличие мутации в ДНК, которые не видит примененная молекулярно-генетическая тест система;+
3) ошибки при исследовании образца молекулярно-генетическим методом;+
4) ошибки при исследовании образца в бактериологической лаборатории.+

34. При подозрении на туберкулезный плеврит исследование плевральной жидкости должно проводиться

1) только молекулярно-генетическими методами;
2) только методом посева на питательные среды;
3) комплексом различных методов микроскопии;
4) комплексом молекулярно-генетических и бактериологических методов.+

35. Приоритетным компонентом комплекса исследования у пациентов с туберкулезом является выявление мутаций, ассоциированных с лекарственной устойчивостью, в ДНК микобактерий туберкулеза к

1) фторхинолонам и аминогликозидам;
2) изониазиду и этамбутолу;
3) бедаквиилину и линезолиду;
4) рифампицину и изониазиду.+

36. Размер генома Mycobacterium tuberculosis составляет примерно

1) 1 млн пар оснований;
2) 450 млн пар оснований;
3) 4,5 млн пар оснований;+
4) 10 млн пар оснований.

37. Распространение микобактерий с множественной лекарственной устойчивостью на территории России, главным образом, связано с генотипом

1) Haarlem;
2) Ural;
3) LAM;
4) Beijing.+

38. Современные лабораторные этиологические исследования основываются

1) на бактериологических и на молекулярно-генетических методах;+
2) только на молекулярно-генетических методах;
3) только на бактериологических методах;
4) на фенотипических методах.

39. Согласно рекомендациям ВОЗ, определение чувствительности микобактерий туберкулеза к бедаквилину

1) возможно, как молекулярно-генетическими, так и фенотипическими методами;
2) возможно только фенотипическими методами, по причине недостаточного количества исследований, подтверждающих связь между определенными мутациями и фенотипической устойчивостью;+
3) возможно только молекулярно- генетическими методами, так как не приняты значения критических концентраций для тестирования фенотипической чувствительности к бедаквилину;
4) не рекомендовано, так как резистентность к этому препарату почти не встречается у клинических изолятов.

40. Согласно современной классификации, род Mycobacterium состоит из

1) около 100 видов;
2) нескольких видов, объединенных в группу Mycobacterium tuberculosis complex;
3) одного вида Mycobacterium tuberculosis;
4) более 200 видов.+

41. Срок получения результата ПЦР исследования на наличие ДНК M. tuberculosis complex должен составлять

1) не более 1- 2 дней;+
2) не более 42 дней;
3) не менее 5 рабочих дней;
4) не более 2 часов.

42. У пациента подозрение на туберкулез легких, какой диагностический материал предпочтительно использовать для молекулярно-генетических исследований?

1) мокроту;+
2) венозную кровь;
3) бронхоальвеолярную лаважную жидкость;
4) мочу.

43. Условия хранения транспортировки мокроты для микробиологического и молекулярно-генетического исследований

1) при температуре от 2 до 8 градусов по Цельсию – в течение 3 суток;+
2) при температуре от 2 до 8 градусов по Цельсию – в течение 7 суток;
3) при комнатной температуре – в течение 48 часов;
4) при комнатной температуре – в течение 6 часов.+

44. Ученый, разработавший метод полимеразной цепной реакции

1) Френсис Крик;
2) Джеймс Уотсон;
3) Кэри Муллис;+
4) Роберт Кох.

45. Чтобы минимизировать вероятность расхождения в результатах, полученных бактериологическими и молекулярно-генетическими методами, рекомендуется

1) исследовать клинический материал, полученный из разных локализаций;
2) увеличить объем исследуемого образца до 10 мл;
3) провести комплексное исследование одного образца;+
4) исследовать не менее пяти образцов одного вида материала.