Тест с ответами по теме «Организация и выполнение процедур флуоресцентной гибридизации in situ (FISH), хромогенной гибридизации in situ (CISH) тканевых срезов с целью приготовления гистологических препаратов» | Тесты НМО с ответами

1. Альфоидные зонды связываются с

1) теломерами хромосом;
2) практически всеми участками;
3) центромерными областями хромосом;+
4) определенными участками хромосом.

2. В качестве оптимального фиксатора ткани для проведения гибридизации in situ на парафиновом срезе

1) 10% нейтральный раствор формалина;+
2) 10% раствор изопропилового спирта;
3) 10% кислый раствор формалина;
4) 10% раствор уксусной кислоты;
5) 10% раствор этилового спирта.

3. Гибридизация in situ это

1) микробиологический метод;
2) цитогенетический метод;+
3) молекулярно-генетический метод;
4) иммуноморфологический метод;
5) гистологический метод.

4. Длительная фиксация в формалине затрудняет ферментативное удаление при гибридизации in situ

1) углеводов, маскирующих нуклеиновые кислоты;
2) нуклеиновых кислот;
3) жиров, маскирующих нуклеиновые кислоты;
4) белков, маскирующих нуклеиновые кислоты.+

5. Для гибридизации in situ в гистологии пригодны парафиновые срезы толщиной

1) 1–2 мкм;
2) 4–6 мкм;+
3) 14–16 мкм;
4) 12–14 мкм.

6. Для наклеивания срезов на предметные стекла в качестве адгезива для последующего проведения гибридизации in situ используют

1) альбумин;
2) крахмал;
3) поли-L-лизин;+
4) желатин.

7. Для наклеивания срезов на предметные стекла в качестве адгезива для последующего проведения гибридизации in situ используют

1) аминопропилтриэтоксисилан;+
2) желатин;
3) альбумин;
4) крахмал.

8. Для определения уровня обработки ферментом при FISH используют флюорохром

1) FITC;
2) TRITC;
3) DАPI;+
4) Texаs Red.

9. Для оценки качества препаратов хромогенной гибридизации in situ используют

1) обычный световой микроскоп;+
2) флюоресцентный микроскоп;
3) электронный микроскоп;
4) конфокальный микроскоп.

10. Избыточная ферментная обработка при FISH приводит к

1) избыточной аутофлюоресценции;
2) снижению сигнала от искомого гена в некоторых клетках;
3) потере сигнала от искомого гена в некоторых клетках;+
4) гетерогенному окрашиванию DАPI.

11. К недостаткам SISH относится

1) детектировать разные сигналы можно только на разных препаратах;+
2) легко интерпретируются с помощью светового микроскопа;
3) длительное хранение препаратов;
4) визуализация структурных компонентов ткани.

12. К недостаткам СISH относится

1) легко интерпретируются с помощью светового микроскопа;
2) визуализация структурных компонентов ткани;
3) на одном препарате можно получить только 1–2 сигнала;+
4) длительное хранение препаратов.

13. Локус-специфичные зонды связываются с

1) определенными участками хромосом;+
2) центромерными областями хромосом;
3) теломерами хромосом;
4) практически всеми участками.

14. М.Л. Пардью и Д. Талла разработали метод ДНК-гибридизации в

1) 1969 году;+
2) 2016 году;
3) 1970 году;
4) 1939 году.

15. М.Л. Пардью и Д. Талла разработали метод РНК-гибридизации в

1) 2016 году;
2) 1939 году;
3) 1969 году;
4) 1970 году.+

16. Максимальная время фиксация хирургического образца для проведения гибридизации in situ на парафиновом срезе

1) не более 18 часов;
2) не более 12 часов;
3) не более 24 часов;+
4) не более 5 часов.

17. Максимальное время фиксации биоптата для проведения гибридизации in situ на парафиновом срезе

1) не более 5 часов;
2) не более 12 часов;+
3) не более 18 часов;
4) не более 24 часов.

18. Недостатки метода FISH

1) относительно простая интерпретация результатов;
2) возможность исследования генетического материала в интерфазных ядрах;
3) непродолжительное время хранения препаратов;+
4) высокая разрешающая способность.

19. Недостаточная ферментная обработка при FISH приводит к

1) избыточной аутофлюоресценции;+
2) «призрачным ядрам»;
3) нарушении морфологии ткани;
4) потери сигнала от искомого гена в некоторых клетках.

20. Плохая сохранность морфологического строения ткани при гибридизации in situ является причиной

1) недостаточное время гибридизации;
2) низкая температура протеолиза;
3) низкая температура при гибридизации;
4) недостаточное временя инкубации с субстратом;
5) некачественной фиксации.+

21. При гибридизации в ткани с осаждением серебром сигнал метки имеет

1) зеленый цвет;
2) синий цвет;
3) голубой цвет;
4) черный цвет;+
5) красный цвет.

22. При оптимальной ферментной обработке ткани во время FISH

1) сигналы от таргентных генов расположены преимущественно в центре ядра;+
2) потеря сигнала от искомого гена в некоторых клетках;
3) референсные сигналы расположены преимущественно в центре;
4) сигналы от таргентных генов расположены преимущественно около ядерной мембраны;
5) снижен сигнал от искомого гена в некоторых клетках.

23. При оптимальной ферментной обработке ткани во время FISH

1) снижен сигнал от искомого гена в некоторых клетках;
2) сигналы от таргентных генов расположены преимущественно около ядерной мембраны;
3) потеря сигнала от искомого гена в некоторых клетках;
4) референсные сигналы располагаются около ядерной мембраны;+
5) референсные сигналы расположены преимущественно в центре.

24. Причиной наличия гибридизационного сигнала в отрицательных контрольных тканях является

1) неправильно подобранное время гибридизации;
2) неправильно подобранная температура гибридизации;
3) неправильно подобранная температура денатурации;
4) неправильно подобранное время денатурации;
5) недостаточное после-гибридизационное промыванием препаратов.+

25. Причиной отлипания срезов со стекла при гибридизации in situ является

1) использование специальных сиалинизированных предметных стекол;
2) использовании специальных поли-L-лизиновых предметных стекол;
3) избыточное время воздействия протеаз;+
4) использование в качестве фиксатора 10%-ного нейтрального формалина.

26. Причиной отсутствия гибридизационного сигнала в положительных контрольных тканях является

1) использование специальных сиалинизированных предметных стекол;
2) некачественная фиксация диагностической ткани;
3) недостаточное после-гибридизационное промыванием препаратов;
4) использование специальных поли-L-лизиновых предметных стекол;
5) неправильно подобраны температуры и/или время денатурации и гибридизации.+

27. РНК в тканях практически полностью деградирует при фиксации в формалине свыше

1) 24 часов;+
2) 44 часов;
3) 34 часов;
4) 14 часов.

28. Слишком слабый гибридизационный сигнал в исследуемых препаратах возникает при

1) использовании специальных сиалинизированных предметных стекол;
2) фиксации 10%-ным нейтральным формалином в течение 16–24 часов;
3) использовании специальных поли-L-лизиновых предметных стекол;
4) низкой температуре протеолиза, денатурации, гибридизации.+

29. Слишком слабый гибридизационный сигнал в исследуемых препаратах возникает при

1) фиксации 10%-ным нейтральным формалином в течение 16–24 часов;
2) применении несоответствующей детекционной системы;+
3) использовании специальных сиалинизированных предметных стекол;
4) использовании специальных поли-L-лизиновых предметных стекол.

30. Толщина образца ткани при вырезке для гибридизации in situ

1) 8 мм;
2) 5 мм;
3) 6 мм;
4) 3 мм;+
5) 10 мм.

Специальности для предварительного и итогового тестирования:

Гистология, Судебно-медицинская экспертиза.