Тест с ответами по теме «Полимеразная цепная реакция» | Тесты НМО с ответами

Ответы на тесты по НМО
Содержание
  1. 1. Амплификация – это
  2. 2. Ассиметричная ПЦР проводится
  3. 3. В каких областях применяется ПЦР?
  4. 4. В клинической медицине ПЦР используют для
  5. 5. В состав реакционной смеси для проведения ПЦР входит
  6. 6. Вложенная ПЦР применяется для
  7. 7. Во время отжига праймеров происходит
  8. 8. Для проведения ПЦР с «горячим стартом» используют
  9. 9. Для чего необходимо использование ионов магния в ПРЦ-реакции?
  10. 10. К интеркалирующим красителям относят
  11. 11. К неспецифичной детекции в ПЦР в реальном времени относят
  12. 12. К неспецифичным системам детекции можно отнести
  13. 13. К специфичным системам детекции относят
  14. 14. Какой метод можно использовать для выявления мутаций?
  15. 15. Количественно оценить экспрессии гена позволяет метод
  16. 16. Необходимыми компонентами ПЦР-смеси являются
  17. 17. Области применения цифровой ПЦР
  18. 18. Отличие репликации in vivo от амплификации
  19. 19. ПЦР в реальном времени позволяет в отличии от ПЦР
  20. 20. ПЦР в реальном времени – это
  21. 21. ПЦР с использованием «горячего старта» проводят для
  22. 22. ПЦР с обратной транскрипцией в клинической практике используется для
  23. 23. ПЦР с обратной транскрипцией позволяет
  24. 24. ПЦР с обратной транскрипцией – это
  25. 25. Полимеразная цепная реакция – это
  26. 26. Праймеры – это
  27. 27. Температура для денатурации составляет
  28. 28. Температура для отжига праймеров составляет
  29. 29. Температура элонгации составляет
  30. 30. Цифровая капельная ПЦР – это
  31. Специальности для предварительного и итогового тестирования:

1. Амплификация – это

1) копирование ДНК;+
2) разрезание нити ДНК;
3) усиление ферментативной активности;
4) ингибирование ферментативной активности.

2. Ассиметричная ПЦР проводится

1) когда необходимо амплифицировать преимущественно обе цепи исходной ДНК;
2) для уменьшения числа побочных продуктов реакции;
3) для увеличения числа побочных продуктов реакции;
4) когда необходимо амплифицировать преимущественно одну из цепей исходной ДНК.+

3. В каких областях применяется ПЦР?

1) философия;
2) фармакогенетика;+
3) криминалистика;+
4) клиническая медицина.+

4. В клинической медицине ПЦР используют для

1) прочтения последовательности РНК;
2) диагностики инфекционных заболеваний;+
3) определения уровня ЛПВП в сыворотке крови;
4) определения аффинности белковых взаимодействий.

5. В состав реакционной смеси для проведения ПЦР входит

1) антитела;
2) манноза;
3) термостабильная ДНК-полимераза;+
4) глюкоза.

6. Вложенная ПЦР применяется для

1) удешевления проведения ПЦР;
2) уменьшения числа побочных продуктов реакции;+
3) обратимости реакции;
4) увеличения числа побочных продуктов реакции.

7. Во время отжига праймеров происходит

1) комплементарное взаимодействие праймера со специфичным участком;+
2) ингибирование ДНК-полимеразы;
3) синтез комплементарной цепочки ДНК;
4) белок-белковое взаимодействие между ДНК-полимеразой и другими компонентами смеси.

8. Для проведения ПЦР с «горячим стартом» используют

1) меченые нуклеотиды;
2) ДНК-полимеразу, блокированную антителами;+
3) минеральное масло;
4) меченые праймеры.

9. Для чего необходимо использование ионов магния в ПРЦ-реакции?

1) поддержание активности ДНК-полимеразы;+
2) обеспечение ингибирования ДНК-полимеразы;
3) обеспечение отжига праймеров;
4) усиление взаимодействия между нуклеотидами.

10. К интеркалирующим красителям относят

1) PE;
2) аминофиллин;
3) SYBR Green I;+
4) FITC.

11. К неспецифичной детекции в ПЦР в реальном времени относят

1) свободные меченые пробы;
2) праймеры-пробы;
3) интеркалирующие красители;+
4) антитела.

12. К неспецифичным системам детекции можно отнести

1) FITC;
2) SYBR Green I;+
3) PE;
4) SYBR Gold;+
5) использование праймеров с флуоресцентными красителями.+

13. К специфичным системам детекции относят

1) FITC;
2) аминофиллин;
3) свободные меченые пробы;+
4) SYBR Green I.

14. Какой метод можно использовать для выявления мутаций?

1) проточную цитометрию;
2) динамометрию;
3) ПЦР;+
4) ИФА.

15. Количественно оценить экспрессии гена позволяет метод

1) вложенная ПЦР;
2) ассиметричная ПЦР;
3) ПЦР с обратной транскрипцией;+
4) секвенирование.

16. Необходимыми компонентами ПЦР-смеси являются

1) ДНК-матрица;+
2) нуклеотиды;+
3) ионы магния;+
4) гемоглобин.

17. Области применения цифровой ПЦР

1) обнаружение химеризма;+
2) обнаружение специфичных антител;
3) прочтение последовательности ДНК;
4) обнаружение специфичного белка в пробе.

18. Отличие репликации in vivo от амплификации

1) взаимодействие in vivo с антителами;
2) отсутствие ДНК-полимеразы;
3) более длинные фрагменты ДНК в амплификации;
4) более короткие фрагменты ДНК в амплификации.+

19. ПЦР в реальном времени позволяет в отличии от ПЦР

1) определить специфичность праймеров;
2) точно количественно оценить копии ДНК в образце и детектировать в реальном времени;+
3) обеспечить усиление комплементарного взаимодействия нуклеотидов;
4) определить длину целевого фрагмента ДНК.

20. ПЦР в реальном времени – это

1) метод оценки количества глюкозы в сыворотке крови;
2) чтение последовательности ДНК;
3) метод определения аффинности молекул;
4) метод, основанный на методе полимеразной цепной реакции, используется для одновременной амплификации и измерения количества данной молекулы ДНК.+

21. ПЦР с использованием «горячего старта» проводят для

1) увеличения числа побочных продуктов реакции;
2) наработки белкового продукта;
3) уменьшения числа побочных продуктов реакции;+
4) определения специфичности белка.

22. ПЦР с обратной транскрипцией в клинической практике используется для

1) определения титра антител;
2) поиска мутаций;
3) очищения белка;
4) диагностики вирусной инфекции.+

23. ПЦР с обратной транскрипцией позволяет

1) обнаружить РНК-вирусы;+
2) диагностировать химерные транскрипты;+
3) оценить наличие белка в клетке;
4) оценить экспрессию генов.+

24. ПЦР с обратной транскрипцией – это

1) чтение обратной последовательности ДНК;
2) метод амплификации специфического фрагмента рибонуклеиновой кислоты (РНК);+
3) чтение прямой последовательности ДНК;
4) синтез белка с целевого фрагмента ДНК.

25. Полимеразная цепная реакция – это

1) экспериментальный метод молекулярной биологии, позволяющий добиться значительного увеличения малых концентраций определённых фрагментов нуклеиновой кислоты;+
2) определение концентрации фармакологического препарата в сыворотке крови;
3) метод наработки белкового продукта в пробе;
4) определение силы связывания антиген-антитело.

26. Праймеры – это

1) олигонуклеотиды длиной около 20 н.о., подобранные на специфический участок ДНК, который необходимо копировать;+
2) клетки, в которых происходит репликация;
3) белки, специфичные к участку ДНК;
4) антитела к ДНК-полимеразе.

27. Температура для денатурации составляет

1) 40-50 градусов;
2) 70-80 градусов;
3) 100 градусов;
4) 93-96 градусов.+

28. Температура для отжига праймеров составляет

1) 30-35 градусов;
2) 93-96 градусов;
3) 40-75 градусов;+
4) 10-20 градусов.

29. Температура элонгации составляет

1) 40-50 градусов;
2) 60-75 градусов;+
3) 10-25 градусов;
4) 93-96 градусов.

30. Цифровая капельная ПЦР – это

1) чтение последовательности ДНК на чипе;
2) метод ПЦР, при котором реакционная смесь после добавления ДНК распыляется на множество мельчайших капель, попадающих на лунки чипа;+
3) наработка преимущественно одноцепочечного продукта реакции;
4) проведение ПЦР с использованием 4 пар праймеров.

Специальности для предварительного и итогового тестирования:

Аллергология и иммунология, Клиническая лабораторная диагностика, Лечебное дело, Общая врачебная практика (семейная медицина), Педиатрия, Педиатрия (после специалитета), Терапия.

Оцените статью
( Пока оценок нет )
reshtestnmo.ru
Добавить комментарий